- PII
- S3034511125050092-1
- DOI
- 10.7868/S3034511125050092
- Publication type
- Article
- Status
- Published
- Authors
- Volume/ Edition
- Volume 524 / Issue number 1
- Pages
- 55-62
- Abstract
- A complex of physicochemical methods (dynamic and electrophoretic light scattering, conductormetry, UV spectroscopy, fluorescence) and ecotoxicological tests were used to study aqueous diluted solutions of the hormone melatonin, which is an endo- and exogenous regulator of animal and plant metabolism. The relationship between the reorganization of the dispersed phase, non-monotonic change in specific electrical conductivity, and fluorescence intensity of the melatonin solutions occurring with dilution, and their effect on the mortality of cladocerans and the growth of wheat roots is shown. It has been established that the most significant impact of the melatonin solutions on biotest objects is in the range of calculated concentrations of 1·10, 1·10–1·10, 1·10–1·10 M, at which the maximum change in the parameters of the dispersed phase and physicochemical properties was detected.
- Keywords
- водная дисперсная система мелатонин низкие концентрации самоорганизация флуоресценция растительные и животные организмы
- Date of publication
- 01.01.2025
- Year of publication
- 2025
- Number of purchasers
- 0
- Views
- 35
References
- 1. Беспятых А.Ю., Бродский В.Я., Бурлакова О.В., Голиченков В.А., Вознесенская Л.А., Колесников Д.Б., Молчанов А.Ю., Рапопорт С.И. Мелатонин: теория и практика. Рапопорт С.И., Голиченков В.А. (ред.). М.: ИД “МЕДПРАКТИКА-М”, 2009. 99 с.
- 2. Stefanović B.V., Spasojević N.M., Ferizović H.N., Janković M. D., Virijević K.M., Dronjak S.S. // Kragujevac J. Sci. 2024. V. 46. P. 86–120. http://dx.doi.org/10.5937/KgJSci24000045
- 3. Boutin J.A., Kennaway D.J., Jockers R. // Biomolecules. 2023. V. 13. P. 943–969. https://doi.org/10.3390/biom13060943
- 4. Garcıa J.J., Lopez-Pingarron L., Almeida-Souza P., Tres A., Escudero P., Garcıa-Gil F.A., Tan D.X., Reiter R.J., Ramırez J.M., Bernal-Perez M. // J. Pineal Res. 2014. V. 56. P. 225–237. https://doi.org/10.1111/jpi.12128
- 5. Banerjee A., Chattopadhyay A., Bandyopadhyay D. // Melatonin Res. 2021. V. 4. P. 232–252. https://doi.org/10.32794/nr111250093
- 6. Рыжкина И.С., Костина Л.А., Муртазина Л.И., Сергеева С.Ю., Муравцева К.А., Докучаева И С., Кузнецова Т.В., Петров А.М. // Изв. АН. Сер. Хим. 2025. Т. 74. № 1. C. 235–244. https://doi.org/10.1007/s11172-025-4518-5
- 7. Wang S.Ya., Shi X.Ch., Wang R., Wang H. L., Liu F., Laborda P. // Food Chem. 2020. V. 320. 126642. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.126642
- 8. Шаповал О.А., Мухина М.Т., Боровик Р.А. // Плодородие. 2024. № 3. C. 35–38. https://doi.org/10.24412/1994-8603-2024-3138-35-38
- 9. Du J., Li W., Wang Zh., Chen Zh., Wang Ch., Lu W., Xiong A., Tan G., Zheng Ya., Li M. // BMC Genomics. 2024. V. 25. P. 1104. https://doi.org/10.1186/s12864-024-11054-y
- 10. Shida C.S., Castrucci A.M.L., Lamy-Freund M.T. // J. Pineal Res. 1994. V. 16. P. 198–201.
- 11. Guðmundsson K.E., Marteinsdуttir G., Kristbergsson K., Kvaran A. // Chem. Pap. 2022. V. 76. P. 5253–5265. https://doi.org/10.1007/s11696-022-02222-z
- 12. Canizo B.V., Quintas P.Y., Wuilloud R.G., Silva M.F., Gomez F.J.V. // J. Mol. Liq. 2022. V. 363. 119902. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2022.119902
- 13. Toraño J.S., Rijn-Bikker P., Merkus P., Guchelaar H.J. // Biomed. Chromatogr. 2000. V. 14. P. 306–310. https://doi.org/10.1002/1099-0801 (200008)14:53.0.CO;2-7
- 14. Almeida E.A., Di Mascio P., Harumi T., Spence D.W., Moscovitch A., Hardeland R., Cardinali D.P., Brown G.M., Pandi-Perumal S.R. // Childs Nerv. Syst. 2011. V. 27. P. 879–891. https://doi.org/10.1007/s00381-010-1278-8
- 15. Pucci V., Ferranti A., Mandrioli R., Raggi M.A. // Anal. Chim. Acta. 2003. V. 488. P. 97–105. https://doi.org/10.1016/S0003-2670 (03)00662-7
- 16. Barreiro Astray S., Barbosa-Pereira L., Lage-Yusty M.A., Lopez-Hernández J. // Food Anal. Methods. 2020. V. 14. P. 734–741. https://doi.org/10.1007/s12161-020-01912-2
- 17. Li S., Zhang L., Yuan H., Yang L., Song F., Liu H., Wei C., Ding H., Ma Q., Su Y. // Гематология и трансфузиология. 2022. Т. 67. C. 62–73. https://doi.org/10.35754/0234-5730-2022-67-1-62-73
- 18. Коновалов А.И., Рыжкина И.С., Пальмина Н.П., Мальцева Е.Л., Сергеева С.Ю., Муртазина Л.И., Салахутдинова О.А., Шевелёв М.Д., Жерновков В.Е. // Докл. АН. 2017. Т. 474. № 2. C. 191–195. https://doi.org/10.1134/S0012501617050025
- 19. Бурлакова Е.Б., Конрадов А.А., Малычева Е.Л. // Хим. физ. 2003. Т. 22. C. 21–40.
- 20. Шимановский Н.Л., Епинетов М.А., Мельников М.Я. Молекулярная и нанофармакология. М.: Физматлит, 2010. 624 с.
- 21. Коновалов А.И., Рыжкина И.С. // Изв. АН. Сер. хим. 2014. C. 1–14. https://doi.org/10.1007/s11172-014-0388-y
- 22. Ryzhkina I.S., Murtazina L.I. // Russ. Chem. Bull. 2024. V. 73. № 12. P. 3487–3522. https://doi.org/10.1007/s11172-024-4465-6
- 23. Ryzhkina I.S., Murtazina L.I., Sergeeva S.Yu., Kostina L.A., Sharapova D.A., Shevelev M.D., Konovalov A.I. // Environ. Technol. Innov. 2021. V. 21. 101215. https://doi.org/10.1016/j.eti.2020.101215
- 24. Ryzhkina I.S., Murtazina L.I., Kostina L.A., Sharapova D.A., Dokuchaeva I.S., Sergeeva S.Yu., Meleshenko K.A., Petrov A.M. // Nanomaterials. 2022. V. 12. P. 1792. https://doi.org/10.3390/nano12111792
- 25. Ryzhkina I., Murtazina L., Kostina L., Dokuchaeva I., Sergeeva S., Meleshenko K., Shevelev M., Petrov A. // Front. Chem. 2022. V. 10. 1063278. https://doi.org/10.3389/fchem.2022.1063278
- 26. Природоохранный нормативный документ Федеративный (ПНДФ) Т 14.1:2:3.13-04, Т 16.1:2:3.10-06, Методика определения токсичности отходов, почв, осадков сточных, поверхностных и грунтовых вод методом биотестирования с использованием равноресничных инфузорий Paramecium caudatum Ehrenberg. 2006 г.
- 27. Биологические методы контроля. Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости цериодафиний. Федеральный реестр 1.39.2007.03221. М: AKBAPOC, 2007. 52 с. http://gestrf.com/normadata/1/4293842/4293842244.pdf
- 28. Природоохранный нормативный документ Федеративный Т 14.1:2:3:4.10-04, Т 16.1:2:2.3:3.7-04, Методика определения оптической плотности культуры водоросли хлорелла Chlorella vulgaris Beijer для определения токсичности питьевых, пресных природных и сточных вод, водных вытяжек из грунтов, почв, осадков сточных вод отходов производства и потребления. 2004 г. https://meganorm.ru/Data/1/4293763/4293763986.pdf
- 29. М 2.1.7.2297-07. Обоснование класса опасности отходов производства и потребления по фитотоксичности. 2.1.7. Почва. Очистка населенных мест. Бытовые и промышленные отходы. Москва, 2007. 7 с. https://meganorm.ru/Data/1/4293751/4293751072.pdf
